Анализ крови на туляремию

Анализ крови на туляремию

ПОСТАНОВЛЕНИЕ №223

Об утверждении Инструкции

4.2.10-19-84-2005 «Лабораторнаядиагностика туляремии у людей и

выделение возбудителя туляремии

из объектов внешней среды»

В целях исполнения Закона Республики Беларусь «О санитарно-эпидемическом благополучии населения» в редакции от 23 мая 2000 года (Национальный реестр правовых актов Республики Беларусь, 2000 г., № 52, 2/172) постановляю:

1. Утвердить прилагаемую Инструкцию 4.2. 2005 «Лабораторная диагностика туляремии у людей и выделение возбудителя туляремии из объектов внешней среды» и ввести ее в действие на территории Республики Беларусь с 3 января 2006г.

2. С момента введения в действие Инструкции 4.2. 2005 «Лабораторная диагностика туляремии у людей и выделение возбудителя туляремии из объектов внешней среды» не применять на территории Республики Беларусь «Инструкцию по лабораторной диагностике туляремии у людей» № 28-6/3, утвержденную заместителем Министра здравоохранения СССР 25 июня 1981 г.

3. Главным государственным санитарным врачам областей и г.Минска довести данное постановление до сведения всех заинтересованных и установить контроль за его выполнением.

М.И. Римжа

УТВЕРЖДЕНО

Постановление

Главного государственного

санитарного врача

Республики Беларусь

2005 №

Инструкция 4.2. 2005

«ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА ТУЛЯРЕМИИ У ЛЮДЕЙ И ВЫДЕЛЕНИЕ ВОЗБУДИТЕЛЯ ТУЛЯРЕМИИ ИЗ ОБЪЕКТОВ ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ»

РАЗДЕЛ I

ОБЩИЕ ТРЕБОВАНИЯ

ГЛАВА 1

ОБЛАСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ

1. Настоящая Инструкция разработана для организации государственного санитарного надзора в части, касающейся проведения лабораторной диагностики туляремии у людей и выделения возбудителя туляремии из объектов внешней среды.

2. Настоящая Инструкция предназначена для специалистов бактериологических лабораторий органов и учреждений государственного санитарного надзора, других организаций здравоохранения в части, отнесенной к их компетенции.

ГЛАВА 2

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ О ВОЗБУДИТЕЛЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ

3. Туляремия – острое или хроническое системное природно-очаговое заболевание человека и животных, вызываемое Francisella tularensis. Возбудитель представляет собой очень мелкие полиморфные неподвижные аспорогенные грамотрицательные палочки, хеморганотрофные аэробные бактерии. Форма чаще шаровидная или овоидная, размеры – 0,2 – 0,7 мкм. В мазках из патологического материала, окрашенных по Романовскому – Гимзе, выявляется нежная капсула слизистой консистенции, спор не образует, жгутиков не имеет.

Возбудитель туляремии не растет на простых питательных средах. Его удается культивировать на средах, содержащих яичный желток, автолизат селезенки и гидролизат казеина, на кровяном агаре с добовлением глюкозы и цистеина, на глюкозо-сывороточном агаре. Оптимальная температура выращивания 36-370С. Образующиеся колонии на твердых питательных средах небольшие, с ровными краями, беловатого цвета. В зависимости от используемой жидкой питательной среды туляремийный микроб может расти как на поверхности в виде пленки, так и вызывать диффузное помутнение бульона.

Возбудитель туляремии – строгий аэроб, обладает слабой ферментативной активностью (способен утилизировать до кислоты немногие углеводы и спирты на специальных средах), патогенные для теплокровных животных с приуроченностью размножения главным образом в паренхиматозных органах и способностью вызывать у чувствительных животных геморрагическую септицемию.

4. Вид Francisella tularensis делится на три подвида: F. tularensis subsp. Holarctica, F. tularensis subsp. Mediaasiatica, F. tularensis subsp.nearctica, (subsp. Tularensis), которые отличаются друг от друга по ареалу их циркуляции, патогенности для животных и человека и некоторым биохимическим признакам.

5. Объектами исследования на зараженность туляремийными бактериями могут быть дикие млекопитающие, кровососущие насекомые (клещи, комары, слепни, блохи и другие), пищевые продукты; объекты внешней среды (солома, фураж, вода из естественных и искусственных водоемов, ил, гидробионты содержимое нор грызунов и другие); патологический материал от больных людей (содержимое бубона, материал из зева, конъюнктивы глаза, отделяемое язвы, мокрота, кровь), секционный материал от умерших людей (увеличенные лимфатические узлы, измененные участки легких и селезенки).

РАЗДЕЛ II

ОРГАНИЗАЦИЯ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

ГЛАВА 3

ОБЩИЕ ПОЛОЖЕНИЯ ОРГАНИЗАЦИИ ПРОВЕДЕНИЯ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

6. Диагностические исследования на туляремию в регламентированном объеме проводятся лабораториями диагностики особо опасных инфекций Республиканского центра гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья (далее – РЦГЭ и ОЗ), областных центров гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья (далее– ОЦГЭ и ОЗ), бактериологическими лабораториями инфекционных больниц и инфекционных отделений.

7. Организация и выполнение диагностических исследований на туляремию в лабораториях должны осуществляться в соответствии с требованиями, регламентирующими:

безопасность работы с микроорганизмами I- II групп патогенности, вся работа по выделению и дифференциации туляремийного микроба из любого исследуемого материала должна проводиться в условиях, предупреждающих возможность инфицирования персонала и обсеменения возбудителем объектов внешней среды;

порядок учета, хранения, передачи и транспортировки микроорганизмов I-IV групп патогенности согласно Руководству «Порядок учета, хранения, передачи и транспортировки микроорганизмов I-IV групп патогенности» № 11-7-13-2002, утвержденному Главным государственным санитарным врачом Республики Беларусь 30 декабря 2002 г.

Забор материала от больных с подозрением на туляремии производится медицинскими работниками инфекционного стационара, где госпитализирован больной.

ГЛАВА 4

МЕТОДЫ ВЫДЕЛЕНИЯ ВОЗБУДИТЕЛЯ ЗАБОЛЕВАНИЯ

Для лабораторной диагностики туляремии применяются три группы методов:

выявление возбудителя заболевания и его растворимых антигенов;

определение специфических антител;

выявление сенсибилизации организма к туляремийным антигенам.

8. Бактериоскопическое исследование. Ввиду очень мелких размеров туляремийный микроб может быть достоверно обнаружен в окрашенных мазках-отпечатках только из обильно обсемененного патологического материала. Четко положительные результаты получают при содержании в 1 г ткани более 1 млрд. микробов. Поэтому бактериоскопия эффективна при исследовании павших диких или биопробных животных, но обычно безуспешна при исследовании убитых на ранних стадиях заболевания зверьков. Она не используется также при исследовании воды, смывов с объектов внешней среды, где концентрация возбудителя может быть незначительной.

Мазок-отпечаток делают, прикладывая к обезжиренному стеклу поверхность свежего среза исследуемого органа лимфатического узла, селезенки, печени, а также мазок крови из сердца. Препарат хорошо просушивают, после чего 15-20 мин фиксируют в смеси Никифорова (этиловый спирт и серный эфир в равных пропорциях). После фиксации мазок окрашивают по Романовскому-Гимзе. Раствор краски готовят из расчета 3-4 капли на 1 мл дистиллированной воды (рН 7,0- 7,2) Окраска продолжается не менее 1 часа (можно до 24 часов). В правильно окрашенном мазке бактерии туляремии имеют сиреневый цвет и легко определяются по размерам, форме и тенденции к кучечному расположению. С целью ускоренной окраски мазков применяют метод, основанный на одновременной фиксации и окраске мазка. Для этого краску Романовского-Гимза смешивают в равных частях с метиловым спиртом (или химически чистым ацетоном). Смесь можно длительно хранить в посуде с притертой стеклянной пробкой. На свежий (не более 2-х суток), высушенный и не фиксированный мазок наносят 20 капель смеси. Через минуту к краске приливают 10 мл дистиллированной воды (рН 7,2). Осторожным покачиванием краску смешивают с водой. Через 10-15 мин краску сливают, мазок промывают водопроводной водой, высушивают и просматривают под микроскопом. Бактерии туляремии окрашиваются в темно-фиолетовый цвет и четко дифференцируются от светло-сиреневого окружающего фона. Количество бактерий, обнаруженных в мазках-отпечатках из органов и крови, учитывают по 4-х балльной шкале. Достоверным для диагностики является обнаружение туляремийных бактерий в количестве, оцениваемом III-IV баллами (большое количество крупных, средних и небольших по величине скоплений бактерий в каждом поле зрения).

9. Бактериологическое исследование. Выделение чистой культуры возбудителя позволяет достоверно утверждать о заражении исследуемого материала туляремийным микробом. Посев на питательные среды применяют для выделения культуры возбудителя туляремии. Возбудитель туляремии не растет на обычных питательных средах -мясопептонном агаре (далее-МПА) и мясопептонном бульоне (далее-МПБ), что служит одним из признаков при идентификации культуры. Наиболее практичной и обычно применяемой средой для выделения и культивирования туляремийного микроба является свернутая желточная среда. Посевы могут быть произведены методом отпечатков кусочками органа или путем тщательного втирания кусочка органа по всей поверхности среды. При обильном засеве рост туляремийных бактерий на свернутой желточной среде появляется в виде сплошного роста уже через 18-24 часа инкубирования при 37ºС; при засеве малым количеством бактерий отдельные колонии становятся заметными на 3-5 сутки и позднее. Посевы следует выдерживать в термостате до 10-12 суток. По внешнему виду рост туляремийных бактерий на свернутой желточной среде хорошо отличается от большинства других бактерий, имеет вид извилистого, слегка блестящего (не сухого), почти бесцветного нежного налета. Для выделения и культивирования туляремийного микроба используют также агаровую среду с добавлением желтка. Среда готовится на основе сухого питательного агара Иркутского научно-исследовательского противочумного иститута (далее-НИПЧИ): на 100 мл стерильного, расплавленного и охлажденного до 45ºС агара добавляют 5 мл куриного желтка с физиологическим раствором (в соотношении 3:2). Для культивирования туляремийных бактерий рименяются различные варианты агаровых сред на рыбных, мясных, дрожжевых основах с обязательным добавлением цистина (цистеина) 0,1%; глюкозы 1%; дрожжевого экстракта (источник витамина В). Чувствительность указанных агаровых сред можно повысить добавлением дефибринированной кроличьей или лошадиной крови (5-10%). Разработаны и используются на практике (указаны в Приложении 1 настоящей Инструкции) питательные сухие агаровые среды для культивирования и выделения туляремийного микроба содержащие все необходимые факторы роста и не требующие добавления крови (или желтка). На свежей агаровой среде приживаются единичные бактерии, при этом формируются колонии, которые становятся заметными через 2-3 суток инкубации, редко — в более отдаленные сроки. Посевы следует выдерживать при 37ºС до 10-12 суток. При посеве взвеси из растертых тканей животного высокоэффективные агаровые среды позволяют обнаруживать единичные бактерии и не уступают биологической пробе. При исследовании трупов животных в первую очередь производят посев из селезенки, печени, лимфатического узла. При посеве из недостаточно свежих органов животных полезно использовать селективные добавки (далее-СД). В качестве СД можно применять пенициллин (100 ед/мл), ампициллин (100 ед/мл), полимиксин (50-100 мкг/мл), кефзол (или цефалексин), амфотерицин В (или амфоглюкамин), ристомицин — сульфат и некоторые другие.

10.Биологические методы исследования. Биологическая проба является самым эффективным способом обнаружения туляремийных бактерий в любом исследуемом материале. Биологическим методом можно исследовать органы павших или убитых диких млекопитающих, кровососущих членистоногих, гидробионтов, воду, смывы с различных субстратов, т.е. материалы, где могут содержаться живые туляремийные бактерии. Для биологической пробы обычно используют белых мышей, которые заболевают и гибнут от туляремии при подкожном введении суспензии, содержащей единичные бактерии. При массивном инфицировании исследуемых объектов мыши погибают уже на 3-4 сутки, при меньшей обсемененности материала гибель животных может затянуться до 7-9 суток, иногда до 15-20 суток. В большинстве случаев животные погибают от туляремии с характерными патологоанатомическими изменениями: обнаруживаются воспалительные изменения ткани на месте заражения (плотный инфильтрат), увеличение, уплотнение и гиперемия лимфатических узлов, особенно близлежащих к месту заражения, резкая гиперемия сосудов подкожной клетчатки, уплотнение и увеличение селезенки, печени, увеличение и гиперемия надпочечников, гиперемия тонкого кишечника. В мазках-отпечатках из селезенки, печени и крови (при окраске по Романовскому-Гимзе или путем люминесцентной микроскопии) обнаруживают большое количество туляремийных бактерий, а в посеве на специальные питательные среды селезенки и печени уже через 18-24 часа появляется рост культуры возбудителя туляремии. Для биологической пробы могут быть использованы и морские свинки, обладающие такой же высокой чувствительностью к туляремии, как и белые мыши, а также дикие грызуны 1-ой группы (обыкновенные полевки, домовые мыши), отловленные на неэнзоотичных территориях и выдержанные в карантине 30 суток. Биопробных животных содержат поодиночке. При их гибели или обнаружении у забитых характерных для туляремии патологоанатомических изменений осуществляют следующий пассаж через белую мышь (подкожным или накожным методами).

Биопробных животных выдерживают:

белых мышей до 21 суток;

морских свинок — до 25 суток, после чего забивают.

ГЛАВА 5

МЕТОДЫ ИДЕНТИФИКАЦИИ ВОЗБУДИТЕЛЯ ТУЛЯРЕМИИ

10. Идентификацию осуществляют на основании совокупности следующих признаков:

морфологии и окраски бактерий в мазках и специфического свечения;

характера роста на питательных средах;

отсутствия роста на простых питательных средах (МПА, МПБ);

агглютинации специфической туляремийной сывороткой;

патогенности для белых мышей и морских свинок.

11. Выделенная культура должна иметь характерный для микроба туляремии рост на свернутой желточной среде в виде извилистого, слегка блестящего (не сухого) почти бесцветного налета не очень сильно выраженной слизистой консистенции, хорошо снимающегося петлей. Культура легко суспензируется. Для изучения морфологии и тинкториальных свойств готовят мазок на предметном стекле, который фиксируют и окрашивают по Граму. В мазке возбудитель туляремии представляет собой мелкую, грамотрицательную коккобактерию. В окрашенных мазках из культуры с плотной среды обнаруживается обильная слизь. Присутствие в мазке окрашенной слизи весьма характерно для возбудителя туляремии.

12. Для проверки отсутствия роста на простых питательных средах используют слабощелочной питательный агар и бульон.

13. Антигенную специфичность выделенной культуры проверяют с помощью реакции агглютинации (далее-РА) с лошадиной (коммерческой) агглютинирующей сывороткой. Для этого испытуемую культуру выращивают в течение 2-х суток при 37ºС на свернутой желточной среде в количестве 2-3 пробирок. Чистоту посева контролируют бактериоскопией. РА ставят общепринятым способом в пробирках. В качестве антигена используют живую испытуемую культуру, суспензированную в физиологическом растворе (рН 7,0-7,2) до концентрации 109 микробных клеток в 1мл (далее м.кл./мл) по оптическому стандарту мутности, соответствующей 10 единицам. После добавления антигена к разведениям сыворотки пробирки выдерживают 2 часа при 37 ºС, затем 12-18 часов при комнатной температуре, после чего проводят учет результатов. Культура должна агглютинироваться до титра или 2/3 титра сыворотки. При этом должна иметь место четкая реакция, сопровождающаяся полным просветлением жидкости и выпадением на дно пробирки плотного агглютината. При встряхивании пробирки агглютинат разбивается на крупные хлопья, а жидкость остается прозрачной.

14. Специфичность выделенной культуры может быть подтверждена также с помощью специфической туляремийной сыворотки. При обработке культуры туляремийной люминесцирующей сывороткой обнаруживают специфическое яркое зелено-желтое свечение бактерий как указано в пункте 18 настоящей Инструкции.

15. Определение вирулентности проводят, но не позднее месячного срока после их выделения, как правило, на одном из двух видов животных (белые мыши или морские свинки). Взвесь исследуемой культуры готовят на физиологическом растворе (рН 7,0-7,2) с содержанием 109 м.кл./мл по оптическому стандарту мутности, которую затем титруют путем 10-кратных разведений от 10-1 до 10-9 от исходной взвеси. Для заражения используют 2 дозы: 10-9 (1 микробная клетка) и 10-8 (10 микробных клеток) по 2-3 животных на каждую дозу. Свежевыделенные туляремийные культуры при подкожном введении вызывают гибель белых мышей (морских свинок) при дозе 1микробная клетка с обнаружением характерных для туляремии изменений в органах и выделением чистой культуры.

16. Вид Francisella tularensis делится на три подвида: F. tularensis subsp. Holarctica, F. tularensis subsp. Mediaasiatica, F. tularensis subsp.nearctica, (subsp. Tularensis), которые отличаются друг от друга по ареалу их циркуляции, патогенности для животных и человека и некоторым биохимическим признакам (цитруллинуреидаза, фосфатаза, пенициллиназа, ферментация глицерина):

Внутривидовая дифференциация возбудителя туляремии

Признак

Подвид
голарктика неарктика медиазиатика
Ферментация глицерина + +
Цитруллинуреидазная активность

+

+

Фосфатазная активность + +
Пенициллиназная активность + +
Вирулентность для кролика +

На территории стран СНГ циркулируют и выделяются культуры голарктического подвида возбудителя туляремии F. tularensis subspecies holarctica, различающиеся по чувствительности к эритромицину (и другим макролидам). Для определения этого свойства используют диски с эритромицином, содержащими 15 мкг антибиотика. Эта концентрация антибиотика позволяет дифференцировать штаммы туляремийного микроба на два биологических варианта: биовар I егу(s) и биовар II erу(r). Для определения принадлежности к тому или иному биовару готовят суспензию испытуемой культуры в концентрации 109 м.кл./мл по оптическому стандарту мутности. 0,5 мл такой суспензии вносят на чашку с агаровой средой, равномерно распределяя по поверхности, после чего накладывают в центральную часть чашки диск с эритромицином. Чашку помещают в термостат при 37ºС. Учет и оценку результатов производят через 1-2 суток. При посеве чувствительной к эритромицину культуры вокруг диска с антибиотиком обнаруживают выраженную зону задержки роста диаметром 2-3 см; при посеве культуры, резистентной к эритромицину, по всей поверхности чашки отмечается равномерный рост.

ГЛАВА 6

ИММУНОСЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

17. Серологические методы диагностики туляремии включают реакции, направленные как на выявление антигенов туляремийного микроба (реакция агглютинации, реакция пассивной гемагглютинации- (далее-РПГА), реакция нейтрализации антител (дале-РНАт), реакции прямой иммунофлюоресценции (далее-РИФ, прямой метод), иммуноферментный метод (далее-ИФА), так и реакции, предназначенные для определения антител к возбудителю (кровяно-капельная, РА, РПГА, РПТГА, непрямой иммунофлюоресцентный метод, (далее — РИФ, непрямой метод), ИФА.

Исследованию серологическими методами подлежит материал, который вместо живых туляремийных бактерий содержит туляремийные антигены и не пригоден для бактериологического исследования (загнившие трупы грызуноз, погадки хищных птиц, помет млекопитающих, субстраты нор грызунов, почва).

На наличие антител к туляремийному микробу исследуют сыворотки людей и грызуноз, добытых при эпизотоологическом обследовании территории.

Серологические исследования на туляремию проводятся в любой диагностической лаборатории после обеззараживания сыворотки добавлением мертиолята (1:10000) с последующим прогреванием при 560 С в течение 30 минут.

Для обнаружения туляремийного микроба используется как прямой, так и непрямой методы иммунофлюоресценции, для обнаружения антител к нему – только непрямой метод.

18. РИФ, прямой метод. При исследовании патологического материала от больных людей и животных, а также из объектов внешней среды может быть эффективен прямой иммунофлюоресцентный метод, позволяющий выявлять как живые, так и нежизнеспособные бактерии по свечению в них специфического антигена. Для обнаружения туляремийного микроба применяют люминисцирующие туляремийные иммуноглобулины. В качестве объектов, подвергающихся исследованию на обнаружение туляремийного микроба у человека с помощью РИФ, могут быть мазки, приготовленные из содержимого кожного аффекта, пунктата бубона, отделяемого слизистой глаза, а из объектов окружающей среды (смывы с поверхностей, воздух, сено, фураж, а также мазки-отпечатки из органов животных и насекомых-переносчиков туляремии).

На фиксированные мазки наносят каплю туляремийной сыворотки. Для гашения неспецифического свечения фона применяют бычий альбумин, меченый родамином, который придает клеткам и другим органическим частицам тусклое оранжево-красное свечение. Перед обработкой препаратов туляремийную люминесцирующую сыворотку и альбумин разводят до удвоенного рабочего разведения, указанного на этикетке (например, если рабочее разведение равно 1:20, то разводят 1:10). После этого альбумин и сыворотку смешивают в равных объемах и наносят на исследуемый препарат, который помещают во влажную камеру (чашка Петри с влажной фильтровальной бумагой на дне) на 15-20 минут, затем промывают проточной водопроводной водой в течение 10 минут и высушивают на воздухе. На препарат наносят каплю забуференного глицерина (9 частей глицерина и 1 часть забуференного физиологического раствора), покрывают покровным стеклом и исследуют под люминесцентным микроскопом. Если препарат необходимо сохранить в течение нескольких дней, края покровного стекла обмазывают парафином и препарат хранят в темном месте при 4ºС.

Микроскопия препаратов. Для микроскопии используется люминесцентный микроскоп МЛ-2 при силе тока 4,5, объективы 90 и 100 и окуляры 5х или 7х (в зависимости от освещенности препарата). Светофильтры следует располагать следующим образом: (от источника света) СЭС-14-14, БС-8-2, ФЗ-1-2. Окулярный фильтр Т-2Н или Ж-18, вспомогательная линза — 1,6. При микроскопии препаратов следует пользоваться нефлюоресцирующим маслом.

В положительных случаях, то есть когда в исследуемом материале имеются туляремийные микробы, в микроскопе на темном или оранжево-красном фоне видны клетки с ярким зеленым свечением по периферии. Центральная часть клетки не светится. Конгломераты туляремийного антигена имеют также яркое зеленое свечение.

Для оценки интенсивности специфического свечения используют четырехкрестовую систему.

Сверкающая флюоресценция зеленого цвета с четко выраженной формой клетки — четыре креста. Яркая флюоресценция зеленого цвета — три креста. Заметная, но слабо выраженная флюоресценция, — два и один крест.

Положительным результатом считается флюоресценция, оцениваемая на четыре и три креста при наличии 2-3 клеток в каждом поле зрения препарата.

При изготовлении препаратов для РИФ особое внимание обращают на тщательное обезжиривание предметных стекол. Каплю исследуемого материала наносят на предметное стекло и делают тонкий мазок. При исследовании слишком густого вязкого материала его следует развести 1:2 физиологическим раствором и после этого сделать мазок, так как в слишком густом мазке не удается отметить свечения отдельных клеток. Препараты высушивают на воздухе при комнатной температуре и фиксируют в 96 º этиловом спирте в течение 15-20 минут. Фиксацию материалов, приготовленных из различного материала, необходимо производить раздельно, чтобы исключить возможность случайного переноса отдельных бактерий с одного стекла на другое. Фиксированные препараты подсушивают на воздухе. Границу исследуемого материала, нанесенного на предметное стекло, отмечают восковым карандашом с обратной стороны препарата. До обработки люминесцирующей сывороткой хранят при 4 ºС.

19. РИФ, непрямой метод. Реакция иммунофлуоресценции в непрямом варианте может быть рекомендована как один из серологических методов определения антител в сыворотке крови людей, вакцинированных против туляремии или реконвалесцентов, а также для диагностики туляремии у людей. РИФ является высоко специфичной и достаточно чувствительной. Она проста в постановке, дает ответ в течение 1,5-2 часов и может служить методом экспресс-диагностики туляремии.

Техника постановки. Для остановки реакции необходимо предварительно приготовить предметные стекла с «пятнами» антигена на них. С этой целью на чистые обезжиренные предметные стекла следует нанести в виде отдельных очень небольших «пятен» взвесь туляремийных бактерий вакцинного штамма в концентрации 500млн туляремийных микробных клеток в одном мл, используя для этого вторую генерацию культуры, полученной при посеве содержимого ампулы коммерческой вакцины на свернутую желточную среду Мак-Коя. «Пятна» делают бактериологической петлей. На каждом предметном стекле следует разместить до 8таких «пятен» по 4 в два ряда, сохраняя при этом необходимый для дальнейшей работы промежуток между отдельными «пятнами» антигена. После подсушивания стекла с «пятнами» антигена фиксируют в течение 20минут в 96º этиловом спирте и подсушивают на воздухе при комнатной температуре. После фиксации препарата границу каждого «пятна» на стороне мазков следует отметить тонким срезом воскового карандаша в виде решетки. Такая решетка препятствует слиянию капель сыворотки в различных разведениях при дальнейшей обработке препарата. Такие препараты можно заготовить заблаговременно и хранить при температуре 4º С в течение 1-2 месяцев. Исследуемую сыворотку разводят физиологическим раствором до получения разведения: 1:5, 1:10, 1:20, 1:40, 1:80, 1:160, 1:320 и 1:640. Стекла с «пятнами» антигена помещают во влажную камеру (чашка Петри с увлажненной фильтровальной бумагой над ней) и на каждое «пятно» антигена наносят одну каплю соответствующего разведения исследуемой сыворотки. При этом следует строго следить, чтобы рядом расположенные капли различных разведений сыворотки не сливались между собой. В противном случае такие стекла бракуют. Для контакта антигена с исследуемой сывороткой стекла оставляют на 30 минут при 37ºС, после чего промывают в проточной воде или в нескольких сменяемых порциях физиологического раствора и подсушивают на воздухе. На полученный таким путем комплекс антиген-антитело наносят люминесцирующую сыворотку против глобулинов человека, взятую в рабочем разведении. Для этого в сухую люминесцирующую сыворотку растворяют в указанном на этикетке ампулы объеме дистиллированной воды, а затем физиологическим раствором рН 7,0 -7,2 доводят до рабочего разведения. РИФ (непрямой метод) проводят во влажной камере, но при комнатной температуре(18-20ºС) в течение 20 минут, после чего люминесцирующую сыворотку стряхивают со стеком. Препараты промывают в течение 5-10 минут под проточной водопроводной водой или в нескольких порциях физиологического раствора при рН 7,2-7,4, подсушивают на воздухе, наносят каплю нейтрального глицерина (9 частей глицерина и 1 часть физиологического раствора) и накрывают покровным стеклом. Такой препарат готов для просмотра в люминесцентном микроскопе. При большом объеме исследуемого материала можно микроскопировать препараты без предварительного заключения в глицерин под покровное стекло. Микроскопию, учет и оценку реакции осуществляют как указано в пункте 18 настоящей Инструкции.

За титр исследуемой сыворотки принимают последнее разведение, которое обеспечивает бактериальной клетке специфическое свечение, оцениваемое на четыре креста и три креста. Разведение сыворотки, при котором отмечается слабое свечение бактериальной клетки, оцениваемое на два креста и один крест, не учитывают. При исследовании сыворотки больного диагностическим титром считают разведение не ниже 1:40, обеспечивающее яркую флуоресценцию бактериальных клеток.

Контролем служат два препарата, в одном из которых «пятна» туляремийного антигена обработаны человеческой сывороткой иммунной к данному антигену, а во втором – сывороткой, не содержащей антител к туляремийному микробу. Обе сыворотки следует брать в разведении 1:5. При последующей обработке таких препаратов люминесцирующей сывороткой против иммуноглобулинов человека должно быть яркое специфическое свечение туляремийных бактерий, во втором — свечение должно отсутствовать. Таким контролям необходимо пользоваться только при освоении этого метода, а в повседневной работе достаточно в качестве контрольного препарата иметь стекло с «пятном» туляремийного антигена, обработанное для туляремии рабочим разведением флуоресцирующей туляремийной сывороткой как указано в пункте 18 настоящей Инструкции. Яркость свечения этого контрольного препарата поможет правильно оценить титр исследуемой сыворотки по ее свечению.

20. Реакция пассивной гемагглютинации является специфичным и высоко чувствительным методом выявления туляремийных антител в сыворотке крови человека. Для постановки РПГА необходимо иметь:

туляремийный эритроцитарный антигенный диагностикум;

контрольные (несенсибилизированные) эритроциты;

нормальную сыворотку кролика;

туляремийную сыворотку.

Для титрования испытуемых сывороток применяется нормальная сыворотка кролика, инактивированная при 560С в течение 30 минут и разведенная физиологическим раствором 1:100.

Испытуемую сыворотку разводят физиологическим раствором 1:25 (0,1 мл сыворотки +2,4 мл физиологического раствора) и инактивируют в течение 30 минут при 560С. Перед исследованием сыворотку адсорбируют 50% взвесью контрольных эритроцитов. К 1,2 мл инактивированной сыворотки добавляют 0,2 мл 50% эритроцитов, встряхивают и оставляют на 30 минут при комнатной температуре. Затем смесь центрифугируют при 1000 об./мин. в течение 2 минут.

Можно оставить сыворотки с эритроцитами на ночь в холодильнике (+40С), в этом случае исключается центрифугирование.

Эритроцитарный диагностикум перед применением разводят физиологическим раствором (рН 7,0-7,2) согласно указанию на этикетке и получают 2,5% взвесь, которая применяется в РПГА. Контрольные (несенсибилизированные эритроциты также разводят согласно указанию на этикетке и применяют полученную 2,5% взвесь для контроля сывороток).

Техника постановки РПГА. Реакцию ставят в прозрачных полистироловых пластинках с лунками. Каждую сыворотку исследуют не менее чем в 6-8 разведениях, начиная с 1:50. Сначала нормальную разведенную 1:100 инактивированную сыворотку кролика разливают во все лунки по 0,5 мл. Затем в первую лунку (контроль сыворотки) вносят 0,5 мл испытуемой сыворотки, предварительно инактивированной и разведенной 1:25, перемешивают и 0,5 выливают. Во вторую лунку также добавляют 0,5 мл испытуемой сыворотки (1:25), перемешивают, переносят 0,5 мл в третью лунку и титруют сыворотку до конца ряда, из последней лунки 0,5 мл выливают. Таким образом получают ряд последовательных двукратных разведений испытуемой сыворотки, начиная с 1:50, в объеме 0,5 мл.

В первые лунки (контроль сыворотки) добавляют микропипеткой по 0,05 мл контрольных эритроцитов. Затем в каждую лунку, начиная со второй, с помощью микропипетки добавляют по 0,05 мл диагностикума. Пластины осторожно встряхивают до полного перемешивания содержимого лунки, следя, чтобы не было разбрызгивания жидкости, и оставляют при комнатной температуре. Учет реакции проводят через 2-3 часа.

При постановке РПГА предусматриваются следующие контроли:

контроль качества нормальной сыворотки кролика (1:100) проводят в двух лунках. К 0,5 мл сыворотки добавляют в первую лунку 0,05 мл 2,5 % взвеси диагностикума, во вторую — 0,05 мл контрольных эритроцитов;

качество диагностикума проверяют путем титрования специфической туляремийной сыворотки, начиная с разведения 1:50 до 1:100000. Затем в каждую лунку добавляют по 0,05 мл 2,5% взвеси диагностикума.

Реакция считается специфической, если в контролях исследуемых и контрольной сыворотке отсутствует гемагглютинация, а титр специфической сыворотки в реакции будет соответствовать титру, указанному на этикетке флаконов эритрицитарного диагностикума.

Оценка реакции проводится по следующей схеме:

4+ — эритроциты покрывают все дно лунки равномерным слоем, иногда наблюдается зонтик;

3+ — эритроциты выстилают все дно лунки тонким равномерным слоем, но площадь его меньше, чем при 4-крестовой реакции, размеры зонтика также меньше;

2+ — агглютинат небольшой, расположен в центре лунки;

1+ — вокруг осадка эритроцитов в центре виден небольшой агглютинат;

Отрицательная реакция – осадок эритроцитов на дне лунки в виде пуговки или маленького кольца.

За титр сыворотки принимают ее последнее разведение с оценкой реакции не менее чем 3+.

Оценка результатов исследования сывороток на туляремию в РПГА у людей:

титр 1:50 – реакция сомнительная;

титр 1:100 и выше – реакция положительная. При записи результатов РПГА следует указывать титр сыворотки.

20.1.Для дифференциальной диагностики может быть использована также реакция торможения непрямой гемагглютинации (РТНГА).

Техника постановки РТПГА. Эту реакцию ставят для подтверждения специфичности положительного результата РПГА, когда он вызывает сомнение или представляет особый эпидемиологический интерес. Механизм реакции заключается в специфическом торможении агглютинации эритроцитов при добавлении к испытуемой сыворотке взвеси убитых клеток туляремийного микроба. В реакции взаимодействуют три компонента: испытуемая сыворотка, специфический туляремийный антиген и антигенный эритроцитарный диагностикум. РТПГА обычно ставят в ряду из 7-8 лунок. Целесообразно параллельно с РТПГА ставить повторную РПГА. В два ряда лунок разливают по 0,25 мл разводящей жидкости, затем в первые лунки обоих рядов вносят в объеме 0,25 мл испытуемую сыворотку и титруют. Получают, таким образом, два одинаковых ряда разведений сыворотки. Вовсе лунки второго ряда добавляют по 0,25 мл разводящей жидкости, а в лунки первого ряда – по 0,25 взвеси туляремийных бактерий такой концентрации, чтобы в этом объеме содержалось количество антигена, способное нейтрализовать 20 – 40 гемагглютинирующих единиц сыворотки. Обычно используют туляремийный диагностикум – взвесь с концентрацией 500 млн. туляремийных бактерий в 1 мл. Для получения такой взвеси коммерческий диагностикум (содержащий 25 млрд. туляремийных бактерий в 1 мл) разводят в 50 раз. Полученная взвесь содержит 500 млн. бактерий в 1 мл или 125 млн. в объеме 0,25 мл. После добавления антигена пластину оставляют на 1 час при комнатной температуре, после чего во все лунки обоих рядов добавляют по одной капле (0,05 мл) антигенного диагностикума, пластину встряхивают и оставляют на ровной поверхности стола. Учет производят через 2 – 3 часа.

Учет и оценка РТПГА. Если в испытуемой сыворотке содержатся специфические антитела к туляремийному микробу, они нейтрализуются добавленным антигеном и в первом ряду лунок гемагглютинации не произойдет, или, при очень высоком титре сыворотки, гемагглютинация будет отмечается в меньшем (на 2-4) количестве лунок, чем в РПГА. В этом случае специфичность РПГА подтверждена. Если же в испытуемой сыворотке содержатся гетерогенные антитела, вызывающие неспецифическую реакцию, гемагглютинация произойдет в обоих рядах, т.е. результаты РТПГА и РПГА совпадут. В таком случае результаты РПГА признаются неспецифическими.

21. Реакция нейтрализации антител (РНАт). Этот метод является универсальным для выявления туляремийного антигена в любом исследуемом материале. РНАт может обнаруживать 1-2 млн. туляремийных бактерий и служит простым дополнительным методом идентификации выделенной культуры. РНАт — трехкомпонентная серологическая реакция, механизм которой состоит в специфической нейтрализации вводимых в реакцию туляремийных антител антигеном, содержащимся в исследуемом материале. В РНАт используют туляремийный антигенный эритроцитарный диагностикум.

Техника постановки и учет РНАт. Первоначально проводят ориентировочное исследование материала в 3-4 разведениях. Для этого в лунки полистироловой пластины наливают по 0,25 мл разводящей жидкости (1% раствор нормальной кроличьей сыворотки на физиологическом растворе рН 7,0- 7,2, предварительно инактивированной при 56 º С 30 мин). Затем в первую лунку вносят 0,25 мл исследуемого материала и титруют переносом по 0,25 мл. Из последней лунки лишние 0,25 мл выливают. После этого во все лунки добавляют по 0,25 мл раствора туляремийной агглютинирующей сыворотки, содержащей 2 гемагглютинирующие единицы (2ГЕ) сыворотки. Для определения гемагглютинирующей единицы (ГЕ) сыворотки в 6 лунок полистироловой пластины наливают по 0,5 мл разводящей жидкости. В первую лунку добавляют 0,5 мл туляремийной сыворотки в разведении 1:10000 (сыворотку предварительно инактивируют при 56 º С 30 мин) и титруют переносом из одной лунки в другую по 0,5 мл. Получают ряд разведений сыворотки 1:20000; 1:40000; 1:80000 и т.д. Затем во все лунки добавляют по 1 капле (0,05мл) антигенного диагностикума 2,5% концентрации. Результаты учитывают через 2-3 часа. Разведение сыворотки в последней лунке с отчетливой агглютинацией эритроцитов соответствует 1 ГЕ. Для РНАт сыворотку берут в 4-х кратной концентрации, принимая во внимание, что в лунки добавляют по 0,25 мл, т.е. именно в данном объеме должны содержаться 2ГЕ. Например, если 1ГЕ составляет 1:80000 (в объеме 0,5 мл), то 2ГЕ = 1:40000, а поскольку в РНАт сыворотку добавляют в объеме 0,25 мл, то применительно к данному примеру для постановки реакции следует использовать сыворотку в разведении 1:20000. Смесь исследуемого материала и сыворотки оставляют на 1-1,5 часа при комнатной температуре. Затем во все лунки добавляют по одной капле (0,05 мл) антигенного эритроцитарного диагностикума 2,5% концентрации. Пластину встряхивают и оставляют на ровной поверхности стола. Учет производят через 2-3 часа. Если в исследуемом материале содержится антиген туляремийного микроба, то он нейтрализует сыворотку и эритроциты не агглютинируются, а образуют на дне лунки маленькое колечко с ровными краями. Результат реакции в таких лунках отмечается как положительный, а в протоколах отмечают знаком (-). При отсутствии в исследуемом материале туляремийного антигена наблюдается агглютинация эритроцитов во всех лунках. Результат отмечают как отрицательный, а в протоколах обозначают знаком (+). В каждом опыте должен быть контроль количества ГЕ. Пробы, в которых в предварительном опыте был обнаружен антиген, отбирают и реакцию повторяют в развернутом опыте (на 6-10 лунок) для определения точного титра реакции. За титр реакции принимают последнее разведение исследуемого материала, вызывающее полное подавление агглютинации эритроцитов. Окончательный опыт дополняют следующими контролями:

0,25мл исследуемой пробы +0,25 мл разводящей жидкости + 1 капля диагностикума;

0,5 мл разводящей жидкости + 1 капля диагностикума.

В обоих случаях агглютинация эритроцитов должна отсутствовать.

При небольшом количестве материала целесообразно ставить РНАт в микрообъемах, используя микротитратор типа Такачи или круглодонные микропланшеты с микропипетками. Чувствительность реакции при этом существенно не меняется. Техника постановки, последовательность всех манипуляций, учет и оценка результатов, а также соответствующие контроли такие же, как и при постановке РНАт в макрообъемах При массовых исследованиях погадок птиц, помета хищных млекопитающих, других объектов внешней среды за диагностический титр принимают разведение фильтрата 1:20 и выше. Реакции в более низких титрах расценивают как сомнительные.

22. Реакция агглютинации служит для установления диагноза у больного и переболевшего (ретроспективный диагноз) и может быть использована при изучении иммунологического состояния организма привитого против туляремии. Появление агглютининов у больных туляремией может быть отмечено через 10-15 дней, при этом агглютинационный титр сыворотки в это время бывает низкий и не превышает 1: 50 – 1: 100, но далее обычно быстро нарастает и на 4-6-ой неделе болезни достигает 1:400 – 1: 800, реже 1:1600 и выше. По достижении максимальной высоты агглютинационный титр сыворотки затем медленно снижается и через 6-12 месяцев составляет 1:50 – 1:400, а позднее падает до 1:10 – 1:50 и на этом уровне может удерживаться в течение многих лет. Длительность сохранения агглютининов делает возможным использование РА для ретроспективного диагноза. У привитых против туляремии агглютинины обнаруживаются через 2-3 недели, достигают через 4-6 недель после вакцинации максимальных титров 1:160 – 1:320, реже выше, затем снижаются до 1:40-1:80 через 6-12 месяцев, а позднее падают до 1:10-1:40 и обычно выявляются в течение 5-7 лет после вакцинации.

Антигеном для постановки РА служит туляремийный диагностикум, представляющий собой убитую формалином взвесь туляремийных бактерий вакцинного штамма. В 1 мл препарата содержится 25 млрд. туляремийных бактерий. Для постановки РА препарат предварительно разводят физиологическим раствором до концентрации 5 млрд. туляремийных бактерий в 1 мл взвеси, что соответствует ранее применявшемуся разведению диагностикума до концентрации 1 млрд. микробных клеток по оптическому стандарту мутности.

Кровь для исследования у больного берут из локтевой вены в количестве 3-5 мл. Реакцию ставят с сывороткой больного, которая должна быть совершенно прозрачна.

Техника постановки РА. В каждую пробирку разливают по 0,5 мл сыворотки, разведенной физиологическим раствором рН 7,0-7,2 до 1:12,5; 1:25; 1:50; 1:100; 1:200; 1:400. Во все пробирки доливают по 0,5 мл взвеси диагностикума в концентрации 5 млрд. туляремийных бактерий в 1 мл. Таким образом, получают соответствующий ряд фактических разведений сыворотки 1:25; 1:50; 1:100; 1:200; 1:400; 1:800; с содержанием в каждой пробирке 2,5 млрд. туляремийных бактерий. В контрольной пробирке содержится 0,5 мл антигена и 0,5 мл физиологического раствора (контроль антигена). Для контроля сыворотки используют исходное разведение в объёме 1 мл без добавки антигена.

После добавления антигена в опытные пробирки штатив встряхивают и помещают в термостат (37º С) на 2 часа. Реакцию оставляют затем при комнатной температуре до следующего дня.

Учет и оценка РА. Учет результатов РА производят через 18-24 часа невооруженным глазом. Оценку реакции осуществляют на основании степени прозрачности надосадочной жидкости в пробирках, количества и характера осадка микробной массы (агглютината):

резко положительная реакция – полное просветление жидкости с осадком микробов на дне пробирки в виде «зонтика»; при встряхивании пробирки осадок разбивается на крупные хлопья; обозначается четырьмя плюсами (4+);

положительная реакция – значительное просветление жидкости с осадком, который при легком встряхивании пробирки поднимается со дна хлопьями; обозначается тремя плюсами (3+);

слабоположительная реакция – видимая невооруженным глазом агглютинация с незначительным осадком; обозначается двумя плюсами (2+);

сомнительная реакция – видимая невооруженным глазом агглютинация без образования осадка; обозначается (1+);

отрицательная реакция – отсутствие агглютинации и просветления жидкости; обозначается минусом (─).

Агглютинационный титр сыворотки учитывают по последнему разведению, которое дало вполне четкую реакцию (не менее трех плюсов).

При учете результатов реакции следует иметь в виду редкую возможность задержки агглютинации (проагглютинационная зона) в небольших разведениях сыворотки.

При серологической диагностике туляремии у человека диагностическим считается титр 1:100 и выше, однако обязательно должно быть прослежено его нарастание. При массовых обследованиях титрование сыворотки начинают с разведения 1:10, 1:20 и т.д. и диагностическим считают титр 1:160 и выше. При отрицательной или сомнительной реакции, а также при положительной реакции в низких разведениях сыворотки у подозрительных на туляремию больных рекомендуют повторить исследование сыворотки через 10-15 дней. Необходимо учитывать возможность выявления положительных реакций сыворотки больного туляремией с бруцеллами и наоборот, что является следствием антигенной близости туляремийного и бруцеллезного микробов. Однако, реакция с гомологичной культурой обычно бывает выше, чем с гетерологичной, что является основой для дифференциальной диагностики.

23. Реакция нейтрализации антигена (далее-РНАг) с иммуноглобулиновым (антительным) эритроцитарным диагностикумом

Реакция нейтрализации антигена может служить дополнительным методом серологической диагностики туляремии и применяется при необходимости подтверждения достоверности результатов реакции пассивной гемагглютинации. Достоинством РНАг является способность выявлять не только полные антитела, но и не полные, так называемые блокирующие антитела. Последние отличаются тем, что вступают в связь со специфическим антигеном (блокируют, нейтрализуют его), но не способны вызывать явление гемагглютинации.

В связи с тем, что в РНАг выявляются как полные, так и неполные антитела, т.е. все антитела, связывающие антиген, часто титр антител в этой реакции бывает выше, чем в РПГА. Особенно эффективна РНАг при ранней диагностике заболевания. РНАг является высокоспецифичной трехкомпонентной реакцией. Механизм реакции состоит в специфической нейтрализации вводимого в реакцию туляремийного антигена антителами, содержащимися в исследуемом материале.

РНАг выполняют с использованием туляремийного эритроцитарного иммуноглобулинового (антительного) диагностикума. Препарат представляет собой формализированные, танизированные эритроциты, сенсибилизированные гамма-глобулином туляремийной агглютинирующей сыворотки, готовится в жидком и сухом виде. Жидкий препарат – 2,5% взвесь эритроцитов с добавлением мертиолата натрия до 1: 10 000. Сухой препарат — высушенная в вакууме 10% взвесь эритроцитов без консерванта. Перед употреблением его разводят в соответствии с указанием на этикетке. При постановке реакций в полистироловых пластинах оба препарата применяют в 2,5% концентрации, а на микротитраторе Такачи – в 0,5% концентрации.

Техника постановки РНАг. В ряд лунок полистироловой пластины наливают по 0,25 мл разводящей жидкости (1%-ный раствор нормальной кроличьей сыворотки на физиологическом растворе рН 7,0-7,2, предварительно инактивированной при 56 С в течение 30 минут). Затем в первую и последнюю лунки вносят по 0,25 мл исследуемой сыворотки, разведенной 1:5, титруют переносом по 0,25 мл до последней лунки. Из предпоследней и последней лунок лишние 0,25мл выливают. Получают следующий ряд разведений сыворотки – 1:10, 1:20, 1:40 и так далее. После этого во все лунки добавляют по 0,25 мл туляремийной культуры такой концентрации, чтобы в этом объеме содержались 2 гемагглютинирующие единицы антигена. Для определения необходимого количества антигена в 8-10- лунок наливают по 0,5 мл разводящей жидкости. В первую лунку добавляют 0,5 мл культуры туляремийных бактерий в концентрации 5 млн. микробных клеток в 1 мл и титруют переносом из одной лунки в другую по 0,5 мл. Затем в каждое разведение добавляют 1 каплю (0,05 мл) туляремийного эритроцитарного иммуноглобулинового диагностикума 2,5% концентрации. Результаты учитывают через 2-3 часа. Концентрация антигена в последней лунке с положительной гемагглютинацией соответствует 1 гемагглютинирующей единице (ГЕ). Для РНАг туляремийные бактерии берут в 4-х кратной концентрации, принимая во внимание, что в лунки добавляют 0,25 мл, т.е. именно в этом объеме должны содержатся 2 ГЕ.

Смесь испытуемой сыворотки и взвеси туляремийных бактерий оставляют на 1 час при комнатной температуре. Затем во все лунки, кроме последней, добавляют по одной капле иммуноглобулинового диагностикума, а в последнюю лунку – одну каплю контрольных эритроцитов, 2,5% концентрации. Пластину встряхивают и оставляют на ровной поверхности. Учет производят через 2-3 часа.

Учет и оценка РНАг. Если в исследуемой сыворотке есть противотуляремийные антитела, то в первых лунках, где их количество большее, они полностью нейтрализуют внесенный в дозе 2 ГЕ антиген. Эритроциты не агглютинируются и оседают на дно лунок в виде пуговок с ровными краями. Результат реакции в таких лунках отмечается как положительный, а в протоколах отмечается знаком (-). Максимальное разведение сыворотки, то есть. последняя лунка, в которой отсутствует агглютинация эритроцитов, оценивается как титр реакции. При отсутствии в исследуемой сыворотке туляремийных антител наблюдается агглютинация эритроцитов во всех лунках. Результат отмечается как отрицательный, а в протоколах отмечают знаком (+). Результаты реакции учитывают, если в контрольной (последней) лунке эритроциты выпали на дно в виде пуговки (агглютинация отсутствует).

При постановке РНАг количество вводимого в реакцию туляремийного антигена должно соответствовать расчетному (2ГЕ в объеме 0,25 мл). Завышение дозы антигена приведет к избытку его во всех лунках и титр реакции будет занижен, а при исследовании сывороток с невысоким титром антител может быть получен отрицательный результат. Отсюда следует необходимость контроля расчетного количества гемагглютинирующих единиц. Контроль ставят следующим образом. Первую лунку отведенного для контроля ряда оставляют пустой, а в последующие 4-5 лунок наливают по 0,25 мл разводящей жидкости. Затем в первую и вторую лунки наливают по 0,25 мл контролируемого антигена и титруют, начиная со второй лунки. После этого во все лунки наливают по 0,25 мл разводящей жидкости и по одной капле (0,05 мл) иммуноглобулинового диагностикума. Пластину встряхивают и оставляют до полного оседания эритроцитов (2-3 часа). Если полноценная гемагглютинация произойдет только в первых двух лунках, значит концентрация антигена рассчитана правильно. Контроль антигена повторяют одновременно с каждой постановкой реакции. Величину гемагглютинирующей единицы антигена определяют заново для каждой серии иммуноглобулинового диагностикума и микробной взвеси. Если обнаружится, что концентрация рабочего раствора антигена отличается от расчетной, необходимо повторить реакцию.

24. Иммуноферментный анализ на твердофазном носителе. Метод используется для выявления туляремийного антигена в различных объектах: органы животных, погадки птиц, помет хищных млекопитающих, другие объекты внешней среды, а также для идентификации выделенных культур возбудителя туляремии. Метод характеризуется высокой чувствительностью, специфичностью, возможностью количественной и автоматизированной оценки результатов, воспроизводимостью и стандартностью основных ингредиентов анализа. С помощью ИФА возможно обнаружение 10 (в степени 4) -5.10 (в степени 4) туляремийных бактерий в 1 мл или 1-5 нг/мл туляремийного антигена. Для постановки ИФА используют диагностическую иммуноферментную тест-систему для определения туляремийного антигена. В соответствии с назначением тест-система представляет собой набор ингредиентов для проведения ИФА. Включает в себя: иммуноглобулины туляремийные, выделенные из лошадиной сыворотки, меченные пероксидазой; туляремийный антиген (далее-ЛПС), полученный из вакцинного штамма туляремийного микроба; набор солей, необходимых для приготовления буферных растворов; субстрат — О – фенилендиамин (далее-ОФД); твин-20; бычий сывороточный альбумин (далее-БСА); планшеты для ИФА однократного применения. Выявление туляремийного антигена в ИФА происходит за счет специфического взаимодействия иммуноглобулинов туляремийных, сорбированных на планшете, с туляремийным антигеном, содержащимся в исследуемом материале. Образовавшийся комплекс «антитело-антиген» выявляют с помощью туляремийных антител, меченных пероксидазой.

Техника постаповки ИФА. В лунки планшета вносят с помощью дозатора по 200 мкл раствора туляремийных иммуноглобулинов в рабочем разведении 20 мкг/мл в 0,02 М растворе фосфатно-солевого буфера (далее-ФСБ) рН 7,2. Адсорбцию туляремийных иммуноглобулинов проводят в течение 120 минут при температуре 37ºС или 18 часов при температуре 20ºС. По окончании адсорбции иммуноглобулины удаляют из лунок планшета встряхиванием и отмывают трехкратно по 5 мин раствором ФСБ, содержащим 0,05 % детергентатвин-20.

Исследуемый материал в разведениях (двух- или десятикратных) на ФСБ-твин, содержащий 1 % БСА, вносят по 100 мкл в каждую лунку. Параллельно с исследуемыми образцами готовят серию последовательных разведений контрольного образца ЛПС в концентрациях от 1 до 104 нг/мл и каждое разведение антигена в количестве 100 мкл вносят в лунки планшета. Планшеты выдерживают в термостате при температуре 37ºС в течение 1 часа, после чего жидкость из планшета удаляют встряхиванием и отмывают планшеты, как указано выше.

В каждую лунку вносят по 100 мкл раствора конъюгата в рабочем разведении (указанном на этикетке); конъюгат разводят на ФСБ-твин, содержащий 1% БСА. Планшеты выдерживают в термостате при температуре 37ºС в течение 1 часа. Жидкость из лунок удаляют встряхиванием и отмывают планшеты, как указано выше.

В каждую лунку вносят по 100 мкл субстратного раствора, содержащего 0,04% ОФД и 0,04% перекиси водорода в 0,1 М цитратно-фосфатном буфере рН 5,5. Инкубацию проводят в темноте при комнатной температуре 15-30 минут и останавливают внесением в лунки по 100 мкл серной кислоты в концентрации 0,5 моль/л.

Оценку результатов проводят по изменению окраски субстратной смеси (от светло-коричневой до оранжево-коричневой) визуально или с помощью микроэлектрофотометра типа Multiscan при 492 нм, сравнивая интенсивность окраски контрольных и опытных проб. Пробы исследуются параллельно в 2 лунках с последующей раститровкой положительных образцов. При исследовании материала на наличие антигена его следует первично разводить 1:100 (по весу или объему), а при получении положительных результатов — раститровать пробы путем двукратных разведений. Появление желто-оранжевого окрашивания в опытных лунках (и положительном контроле с ЛПС) при его отсутствии в лунках с отрицательными контролями свидетельствует о наличии туляремийного антигена в пробах. При фотометрическом учете результатов анализа проба считается положительной, если ее оптическая плотность (далее-ОП) в 2 и более раза превосходит наивысшее значение ОП отрицательных контролей, которое не должно превышать 0,25.

25. Молекулярно-биологическиеметоды. В последние годы в ряде случаев используют метод определения ДНК возбудителя туляремии в различных объектах с помощью полимеразной цепной реакции – (далее ПЦР). Метод превышает по чувствительности как бактериологические, так и серологические методы, а также позволяет выявлять некультивируемые или «покоящиеся» формы возбудителя туляремии, что важно для прогнозирования эпизоотической ситуации и определения потенциальной эпидемической опасности природных очагов. В основе метода ПЦР лежит многократное копирование (амплификация) специфического фрагмента ДНК-мишени, который является маркерным для данного вида. ПЦР обладает высокой чувствительностью, позволяет выявить 100-1000 бактериальных клеток в пробе. Важным преимуществом перед иммунологическими тестами выявления туляремийного антигена является высокая специфичность ПЦР (отсутствуют перекрестные реакции с ДНК E.coli, V.cholerae, Brucella., Y.enterocolitica 0-9, Y.pestis EV, S.typhimurium). Подготовку проб для исследования (выделение ДНК) и проведение ПЦР осуществляют с помощью специального набора, в который включены все необходимые ингредиенты. При диагностике туляремии у людей ДНК определяют в сыворотке крови, спинномозговой и синовиальной жидкости и других.

ГЛАВА 7

ТЕСТЫ, ВЫЯВЛЯЮЩИЕ ПОВЫШЕННУЮ СЕНСИБИЛИЗАЦИЮ ОРГАНИЗМА К ТУЛЯРЕМИЙНОМУ АНТИГЕНУ

26. Аллергический метод диагностики туляремии. Аллергический метод диагностики туляремии основывается на особенностях организма человека, заболевшего или переболевшего туляремией, отвечать местной аллергической реакцией в виде гиперемии и инфильтрата на введение туляремийного антигена (тулярина). У больных туляремией людей кожная аллергическая реакция становится положительной обычно с 3-5-х суток болезни, реже в более поздние сроки, и сохраняется многие годы, благодаря чему аллергический метод служит для ранней или ретроспективной диагностики туляремии и является строго специфичным. У привитых живой вакциной также возникает аллергическая реактивность, но она развивается медленнее (через 10-15 дней после вакцинации) и удерживается 5-6 лет, иногда дольше. Реакция аллергии может служить методом для определения сохранности вакцинального иммунитета.

Аллергическую пробу ставят как накожно, так и внутрикожно с соответствующим тулярином:

27. Внутрикожная проба с тулярином. Для внутрикожной пробы применяют тулярин – взвесь туляремийных бактерий вакцинного штамма, убитых нагреванием при 70ºС в течение 1 часа. Взвесь готовят в физиологическом растворе, содержащем 3% глицерина. В 1 мл препарата содержится 500 млн. убитых бактерий. Выпускают препарат в запаянных ампулах, содержащих 1мл препарата, что составляет 10 человеко-доз. Препарат предназначен в первую очередь для диагностики туляремии.

Техника постановки реакции. Тулярин в количестве 0,1 мл вводят стерильным шприцем с тонкой иглой (с коротким срезом) строго внутрь кожи левого предплечья (на границе верхней и средней трети). Кожу предплечья предварительно обрабатывают спиртом или эфиром. На месте введения препарата образуется беловатый пузырек диаметром 3-4 мм, который через полчаса рассасывается.

Учет и оценка реакции. Учет реакции производят через 24-48 часов путем осмотра и ощупывания участка кожи, куда был введен тулярин. При положительной реакции на месте введения тулярина уже через 6-10 часов обнаруживается покраснение (гиперемия) и отек (инфильтрат). Через 24 часа реакция кожи выражена вполне отчетливо и имеет вид гиперемированного, нередко болезненного инфильтрата. Реакцию считают положительной при наличии инфильтрата и гиперемии диаметром не менее 0,5 см. Интенсивность реакции на тулярин определяют по величине реагирующего участка (отека и гиперемии) кожи, который измеряют в сантиметрах в двух взаимоперпендикулярных направления. Изменения кожи в виде гиперемии без инфильтрата, исчезающей через 48 часов, расценивают как отрицательный результат. Сомнительной реакцию считают, если через 24 часа на месте введения тулярина имеется лишь незначительное покраснение и инфильтрат кожи диаметром менее 0,5 см.

В сомнительных и подозрительных случаях необходима повторная постановка реакции, так как отрицательный результат мог быть обусловлен ранним сроком постановки реакции. Так, реакция аллергии может запаздывать при легочной форме туляремии. Запаздывание реакции возможно также при раннем применении антибиотиков для лечения больного. В ряде случаев аллергическая реакция сопровождается образованием пустулы или кратковременным лимфангоитом и ощущением некоторой болезненности с незначительным увеличением регионарных лимфатических узлов и даже повышением температуры тела на 1-1,5ºС в течение 1-2 дней. Известны случаи описания некроза на месте инъекции тулярина. Наиболее интенсивные реакции наблюдаются у лиц, перенесших туляремию, особенно при обследовании их вскоре после болезни.

28. Накожная проба с тулярином. Для накожной пробы применяют тулярин – взвесь туляремийных бактерий вакцинного штамма, убитых нагреванием при 70ºС в течение 1 часа. Взвесь готовят в физиологическом растворе, содержащем 3% глицерина. В 1 мл препарата содержится 10 млрд. убитых бактерий. Выпускают препарат в запаянных ампулах, содержащих 1 мл, что составляет 20 человеко-доз. Препарат предназначен в первую очередь для определения иммунитете у привитых против туляремии или для анамнестического обследования.

Техника постановки реакции. Перед употреблением ампулу с накожным тулярином встряхивают до образования равномерной взвеси. Одну каплю тулярина глазной пипеткой наносят на тщательно обработанную спиртом и эфиром кожу наружной поверхности левого плеча в его средней трети. Через каплю стерильным оспопрививательным пером делают две параллельные насечки длиной 8-10 мм, соблюдая расстояние между насечками 5мм, до появления росинок крови. Затем тулярин тщательно втирают в насечки плоской стороной оспопрививательного пера непродолжительное время (до 1 минуты). Оспопрививательное перо после каждой пробы обеззараживают спиртом, а затем обжигают на пламени или кипятят. Тулярин применяют немедленно после вскрытия ампулы.

Учет и оценка реакции производят через 48-72 часа путем осмотра и измерения поперек сделанных насечек отечности и красноты кожи в сантиметрах. Положительная реакция выражается отечностью кожи вокруг насечек и краснотой, которые иногда появляются уже через 24 часа после введения тулярина, через 48-72 часа реакция обычно ярко выражена и далее постепенно угасает, исчезая полностью к 7-10-12 дню. Диаметр реагирующего участка кожи достигает 1-2 см. В редких случаях по ходу насечек появляются везикулы, исчезающие через 2-3 дня. Для оценки интенсивности реагирующий участок кожи, определяемый по границе красноты, измеряют по поперечнику сделанных насечек. Реакцию считают положительной при величине реагирующего участка кожи не менее 0,5 см или наличии вдоль насечек ясного покраснения или небольшой отечности (валик). При правильной постановке накожная туляриновая проба по чувствительности не уступает внутрикожной но, в отличие от последней, не сопровождается повышенными местными или общими реакциями. Категорически запрещается накожный тулярин вводить внутрикожно или подкожно, так как он вызывает бурную местную и общую реакцию.

29. Реакция лизиса лейкоцитов (далее-РЛЛ). Реакция лейкоцитолиза основана на явлении разрушения лейкоцитов в сенсибилизированном организме под действием специфического антигена. РЛЛ используется при лабораторной диагностике туляремии у человека, так как она становиться положительной уже к 3-4 дню заболевания. Кроме того, она может быть использована для оценки напряженности иммунитета у вакцинированных против туляремии, а также при ретроспективном исследовании.

Техника постановки реакции лизиса лейкоцитов. В две лунки полистироловой пластины вносят 0,1мл исследуемой крови. Предварительно в 1 лунку вносят взвесь убитых прогреванием (700 С, 1 час) туляремийных микробов в концентрации 10 млрд.м.к/мл или тулярина для накожного применения в 5 % растворе цитрата натрия, а во вторую лунку (контроль) предварительно вносят 0,1 мл 5 % цитрата натрия. Пластинку помещают на 2 часа в термостат при 370С. Затем по 0,02 мл из каждой лунки переносят в соответствующие лунки, содержащие 0,4 мл 3 % уксусной кислоты, подкрашенной до светло-голубого цвета метиленовой синькой. Количество лейкоцитов подсчитывают в камере Горяева без учета разрушенных или собравшихся в кучки клеток. Наличие лейкоцитов после инкубации в опытной и контрольной пробирках подсчитывается по формуле: количество лейкоцитов после инкубации х100% количество лейкоцитов до инкубации.

Показатель специфического лизиса лейкоцитов (далее — ПСЛ) подсчитывается путем определения разницы — процент уменьшения лейкоцитов в опытной пробирке минус процент уменьшения лейкоцитов в контроле. ПСЛ выражается отрицательной величиной и колеблется в пределах от -10 до -30%. ПСЛ меньше — 10% свидетельствует о неспецифическом лизисе.



Источник: cow-leech.ru


Добавить комментарий